Evaluation of in vitro induction means to plant callus in foliar explants of Annona diversifolia Safford (Magnoliales: Annonaceae)
Keywords:
Annona diversifolia, Callus induction, Contamination, Oxidation, Survival, In vitroAbstract
In order to induce the formation of in vitro plant calluses in foliar explants of Annona diversifolia (A. diversifolia), the use of six plant callus induction treatments in explants of three-year-old adult specimens from nursery conditions was evaluated (CAPOSA SA. de C.V.). The incubation was in darkness conditions at a temperature of 24-26°C. The experimental design was completely randomized with three repetitions of ten experimental units per treatment. No callus formation was induced in any treatment. The percentages of contamination (PC), oxidation (PO) and survival (PS), were measured weekly during a period of five weeks. The PO and PS, show significant differences at the level of 1% (F> 5.064). The treatment f (100% B5 medium (Gamborg et al., 1968) + 2,4-D (2 mg / L) + Kin (1 mg / L)) based on Gómez et al. (2006), obtained a PO of 53.33% and a PS of 46.66% during week five. The results indicate that the treatment was the most adequate to prolong survival in laboratory conditions.
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References
Azofeifa A. (2009). Problemas de oxidación y oscurecimiento de explantes cultivados in vitro. Agronomía mesoamericana, 20(1): 153-175.
Castro J., (2007). Cultivo de la anona (Annona cherimola, Mill). Ministerio de Agricultura y Ganadería, Costa Rica.
Centro de Tramites de Importaciones y Exportaciones de El Salvador. (2018). Exportaciones anonas frescas registradas en CIEX El Salvador.
Cruz E. (2002). Cultivo de anona. Centro Nacional de Tecnología Agropecuaria y Forestal (CENTA). El Salvador.
Cruz E. y Deras H. (2000). Colecta y establecimiento de anonáceas en El Salvador. Agronomía Mesoamericana 11(2), 91-95.
Dipré D., Chavarría Y., Mejía A., Castillo M., Vega B., Vega W. (2012). Multiple direct organogenesis in soursop (Annona muricata L.). Electronic Journal of Biotechnology
Fernández C., Díaz M., González L. (2015). Enraizamiento in vitro de embriones cigóticos de Acrocomia aculeata (Jacq.) Lodd ex Mart. Colombia forestal 19(1), 67-78
Gamborg, O., Miller, R., Ojima, K. (1968). Nutrient requirements of suspension cultures of soybean root cells. Exp. Cell Res. 50, 151-158.
Gómez C., Uribe m., Ríos D., Sánchez-Olate M. (2006). Inducción de callo embriogénico en Eucalyptus globulus Labill. Interciencia 31(10), 734-738.
Irigoyen J. (2004). Guía técnica del cultivo de la anona. Instituto Interamericano de Cooperación para la Agricultura, El Salvador: Ministerio de Agricultura y Ganadería.
Landaverde V., López A., Vásquez T. (2002). Estudio de inducción a callo embriogénico en variedades comerciales de café (Coffea arabica) de El Salvador (Tesis de pregrado). Universidad de El Salvador, El Salvador
Lemos E. y Blake J. (1996). Micropropagation of juvenile and mature Annona muricata L. Journal of Horticultural Science 71, 395-403
López C., Carmona E., Arana A., González I. (2014). Biotechnology applied to Annona species: A review. Rev. Bras. Frutic. 36 017- 021.
Murashige T. & Skoog F. (1962). A revised medium for rapid growth and bioassays with tabacco tissue cultures. Physiol. Plant. 15, 473-497.
Marks T. y Simpson S. (1990). Reduced phenolic oxidation at culture initiation in vitro following the exposure of field-grown stock plants to darkness or low levels of irradiance. J. of Hort. Sci. 65, 103-111.
Orantes H. y López Y. (2018). Evaluación de métodos de desinfección para el establecimiento in vitro de explantes foliares de Annona diversifolia Safford (Magnoliales: Annonaceae). Comunicaciones científicas y tecnológicas 4(2), 396-404.
Ramírez M., León de Sierralta S., Urdaneta A. (1999). Evaluación de desinfectantes superficiales en el establecimiento in vitro de Psidium guajava L. y Psidium friedrichsthalianum (Berg) Nierdz. Rev. Fac. Agron. (LUZ) 16, 243-255.
Ramírez M., Urdaneta A., León de Sierralta S. (2002). Establecimiento in vitro de explantes adultos del guanábano (Annona muricata L.) tratados con hipoclorito de sodio. Rev. Fac. Agron. (LUZ) 19, 48-55.
Rincón A., Ortega R., Urdaneta J., León de Sierralta S., Bracho B., Ramírez M. (1999). Establecimiento aséptico de brotes laterales de Annona spp. Rev. Fac. Agron. (LUZ) 1,76-81.
Rodríguez M., Latsague M., Chacón M., Astorga P. (2014). Inducción in vitro de callogénesis y organogénesis indirecta a partir de explantes de cotiledón, hipocotilo y hoja de Ugni molinae. Bosque 35(1), 111-118
Orellana M. (2005). Caracterización de materiales genéticos de Anona (Annona diversifolia) en los municipios de Berlin y Mercedes Umaña, Departamento de Usulután (Tesis de pregrado). Universidad de El Salvador, El Salvador
Otero M., Becerril A., Castillo A., Michel A., Ariza R., Barrios A., Rebolledo A. (2006). Producción de ilama (Annona diversifolia Saff.) en el trópico seco de guerrero, México. Chapingo Serie Horticultura 12(2), 137-143
Vacca M., Avilés Z., Bonomo M., Díaz L. (2015). Efecto del picloram en la inducción de embriogénesis somática de Pterogyne nitens Tul. “tipa colorada”. International Journal of Innovation and Applied Studies 11(3), 771-777.
Velásquez M., González A., Mata F., León de Sierralta S., Esparza D., Ramírez M. (2004). Tipo de sombreamiento y tiempo de crecimiento de brotes laterales sobre la viabilidad de explantes de Annona muricata L. Rev. Fac. Agron. (LUZ) 21, 12-18.
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